Magbind Gel Extraction Kit
磁珠法瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒
目錄號：K2515
運輸條件：室溫（15-25℃）。
保存條件：Magbeads 2-8℃，其他組分室溫。
Size | 48 prep | 4×96 prep |
Buffer MG | 45 ml | 3×120 ml |
Buffer MW1 (concentrate) | 13 ml | 2×52 ml |
Buffer EB | 12 ml | 48 ml |
Magbeads | 1 ml | 8×1 ml |
組分說明
本產(chǎn)品僅供科研使用，請勿用于臨床診斷及其他用途
產(chǎn)品簡介
本試劑盒提供了一種簡單、快速、高效的用于瓊脂糖凝膠 DNA回收的方法。它可
以從用TAE或TBE制成的瓊脂糖凝膠中回收100 bp以上的DNA片段，回收效率高達80%。
溶膠液將瓊脂糖膠溶解后，磁珠選擇性的吸附 DNA片段。經(jīng)漂洗后，洗脫得到的 DNA
純度良好，可用于測序、酶切、PCR、克隆等下游實驗。
該試劑盒可與液體工作站或KingFisher核酸提取儀配套使用，簡單、快速的進行大
規(guī)模提取，大大降低了實驗者的工作量和實驗中的人為誤差。
說明
Time for1 sample Time for 96 samples
Sampletype Typical yield DNA size (handle) (BioRobot)
Agarose Gel Up to 80% 100 bp plus 40 min 1-2 hour
實驗前準備及重要注意事項
1. Magbeads嚴禁冰凍 、離心。水凍和離心可能會對Magbeads造成不可逆的損害。
2.電泳時使用新的電泳緩沖液，以免影響電泳和回收效果。
3.切膠時，紫外照射時間應(yīng)盡童短，以免對DNA造成損傷。
4.第---次使用前應(yīng)按照試劑瓶標簽說明在Buffer MW1中加入無水乙醇并做好標記。
5. Magbeads在使用前一定要渦旋震蕩2啾使其充分混勻。
6.如Buffer MG中出現(xiàn)沉淀，請在56C水浴鍋中重新溶解，搖勻后即可使用。
7.實驗步驟4、6、8和12中用Thermomixe!震蕩的目的是為使磁珠充分懸浮于溶液中，
以便使磁珠能夠充分吸附核酸，將磁珠表面的雜質(zhì)充分去除或?qū)⒑怂釓拇胖楸砻娉?/span>
分洗脫。不同廠家生產(chǎn)的Thermomixe震蕩效果不同，如1400 rpr時不能使磁珠充
分混勻，請調(diào)節(jié)震蕩頻率直至磁珠能夠充分混勻。
自備試劑
1.加熱恒溫混勻儀一建議使用 Thermo Fisher設(shè)計生產(chǎn)的Thermomixero
2.磁力架一建議使用DynaMag"M_
3.無水乙醇、75%乙醇。
操作步驟
1.在長波紫外燈照射下將目的條帶從瓊脂糖凝膠中切下(盡童去除多余瓊脂糖膠)，
稱重后將其放入干凈的1.5 m離心管中。
2.向上-步的離心管中加入3倍膠體積的Buffer MG (如果膠塊重0.1 g, 其體積視為
100!)后，將其放入50C、1400 rpr的Thermomixe中震蕩溶膠10分鐘。
注意:如無Thermomixer.可將高心管放于50仁水浴鍋或金屬浴中孵有10分鐘。期間每隔2分鐘渦旋展蕩5秒鐘。
3.將上-步的離心管從Thermomixe中取下，檢測腋塊是否*融化以及溶液是否由黃
色變成紫色(如膠塊未*溶解，繼續(xù)在Thermomixer中震蕩融解5分鐘;如溶液變
成紫色，向離心管中加入10以3 M的醋酸鈉溶液)。短暫離心后將其室溫放置5分鐘。
4.向上-步離心管中加入20以Magbeads, 渦旋震蕩5秒鐘后將其放入25C、1400 rpml
的Thermomixe中震蕩結(jié)合5分鐘。
注意: 1) 如果溶液總體積大于1ml.每增加100p!可向高心管中多加入2 y的Megbeds:如果溶
液總體積小于0.5 ml.可將Magbends的用量減少至10 以
2)如無Themomiser.可將高心管連續(xù)額倒混勻10分鐘。
5.將上- -步的離心管放于磁力架上靜置1份鐘，待Magbeads*吸附于離心管的側(cè)壁
上后*棄去溶液(保持離心管固定于磁力架上)，期間避免接觸Magbeadso
6.向離心管中加入500以Buffer MW1 (加入前檢測是否已加入無水乙醇)后，將離心
管從磁力架上取下，渦旋震蕩秒鐘后放入25C、1400 rpr的Thermomixe中震蕩3分鐘。
注意:如無Thermomixer. 可將高心管渦旋層蕩10秒鐘使Megbead流分懸浮于源洗液中。
7.將上- 步的離心管放于磁力架上靜置1份鐘，待磁珠*吸附于離心管側(cè)壁上后輕
輕顛倒磁力架將離心管蓋上的雜質(zhì)洗落后*棄去溶液(保持離心管固定于磁力架
上)，期間避免接觸Magbeadso
注意:棄去溶液時。如高心管董上有殘留溶液。需用移液器進一步去除。
8.向離心管中加入600 μl 75%的乙醇后，將離心管從磁力架上取下，渦旋震蕩5秒鐘后
放入25C、1400 rpm的Thermomixe中震蕩3分鐘。
注意:如無Thermomixer. 可將高心管滿旋層蕩10秒鐘使Magbeads充分懸浮于漂洗液中。
9.將上一步的離心管放于磁力架 上靜置1份鐘，待磁珠*吸附于離心管側(cè)壁上后輕輕
顛倒磁力架，將離心管蓋上的雜質(zhì)洗落后*棄去溶液(保持離心管固定于磁力架
上)，期間避免接觸Magbeads。
注意:棄去溶液時。如高心管蓋上有殘留溶液。需用移液暴進一步去除。
10.重復(fù)步驟8-9。
11.保持離心管固定磁力架上，用10ul移液器進一步去除離心管管底和管蓋上的溶液后室溫放置10分鐘。
12．向離心管中加入30-100 μl Buffer EB或去離子水，將離心管從磁力架上取下，渦旋
震蕩使Magbeads*懸浮于洗脫液后將其放入65℃、1400 rpm的Thermomixer中震蕩洗脫10分鐘。
注意：如無Thermomixer，可將離心管放于65℃水浴鍋或金屬浴中孵育10分鐘，期間每隔2分鐘渦旋震蕩5秒鐘。
13．將上一步的離心管放置于磁力架上靜置 2分鐘，待Magbeads*吸附后用移液器
將洗脫液轉(zhuǎn)移至新的離心管中-20℃保存?zhèn)溆茫藭r可以棄去Magbeads。
純化回收得率的計算
我們建議通過瓊脂糖電泳純化前后的樣品進行回收得率的計算。不建議通過260
nm處的光吸收值來計算回收得率。因為溶液中單鏈、雙鏈 DNA和dNTP以及一些純化
前的某些雜質(zhì)在260 nm處都有光吸收，這樣在計算回收前樣品中 DNA濃度時會得到一
個假的、虛高的DNA濃度值。
